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产品简介
PEI 40K Transfection Reagent(线性化聚乙烯亚胺转染试剂),是一种以线性化聚乙烯亚胺为主体、分子量为40000的高电荷阳离子聚合物,其本身带正电,可以有效的结合带负电的核酸,与之形成复合物,并导入到细胞中,适用于细胞的质粒DNA转染。PEI 40K(线性化聚乙烯亚胺)转染试剂细胞毒性低,转染效率高且成本低,相较于脂质体类转染试剂,性价比极高。目前已经验证线性PEI 40K转染试剂广泛适用于多种细胞系包括HEK-293、HEK293T、CHO-K1、COS-1、COS-7、NIH/3T3、Sf9、HepG2和Hela细胞等,转染效率高达80%~90%。本产品主要成分PEI 40K浓度为1 mg/mL。
储存与运输
冰袋(wet ice)运输;4℃保存,有效期至少6个月;长期不用可-20℃保存更长时间,避免反复冻融。
组成
Component |
G1802-1ML |
G1802-10ML |
PEI 40 K Transfection Reagent |
1 mL |
10×1 mL |
产品说明书 |
1份 |
操作步骤
1. 贴壁细胞转染前准备工作(6孔板为例,其他规格参考附表):
a) 转染前一天,将细胞以合适的密度均匀种植于孔板中,以正式转染时细胞汇聚至70-85%为宜;
b) 转染前,去除原细胞培养基,用PBS清洗1-2次后,更换1.8 mL不含血清或者低血清(5%以下)的基础培养基,或Opti-MEM;不同细胞对于血清依赖性不同,根据具体细胞种类调整。
c) 将换好液的细胞放置于培养箱中,并开始配制转染复合物。
2. 悬浮细胞转染前准备工作:
a) 转染当天,将适量的细胞,离心去除培养基后,用不含血清或者低血清(5%以下)的基础培养基重悬;
b) 将准备好的悬浮细胞放置到培养箱中,并开始配制转染复合物,转染复合物和培养基之间的体积比,可以参考贴壁细胞的比值,进行适当调整。
3. 转染复合物准备:
a) 配制A液:100 μL不含血清的基础培养基与2 μg质粒DNA,吹吸混匀;
b) 配制B液:100 μL不含血清的基础培养基与6-8 μL PEI 40 K Transfection Reagent,吹吸混均;
c) 将B液加到A液中,轻轻吹打混均,室温孵育15 min,使其形成DNA-PEI转染复合物。
4. 转染细胞:
a) 将上一步得到的转染复合物,以画十字或者环绕的方式,滴加到之前换好液的孔板中;
b) 手持孔板在平面上画“8”字或其他的方式轻摇培养板,使其混合充分,置于37℃,5% CO2培养箱中孵育;
c) DNA-PEI转染复合物与细胞共同孵育4-6 h即有较好的转染效率,适当延长或过夜孵育,转染效率更佳。
注意事项
1. 请使用状态良好的健康细胞,复苏的细胞建议至少传代2次后再进行转染。
2. 请使用高质量、无内毒素的质粒DNA。
3. 转染时高浓度血清以及抗生素的使用,可能会影响细胞状态以及转染效率。
4. 不同的细胞耐受性、敏感性不一样,转染孵育时间长短,以及PEI/DNA使用比例,可视情况酌情调整。
5. 操作时请穿实验服,佩戴一次性手套。
附表:不同细胞培养容器转染使用量(仅供参考)
培养器皿 |
生长面积 (cm2) |
接种细胞数 |
DNA量 (μg) |
PEI (μL) |
转染复合物体积 (μL) |
总体积 (mL) |
96孔板 |
0.3 |
(2-4)×104 |
0.1 |
0.3-0.4 |
10 |
0.1 |
24孔板 |
1.9 |
(1.2-2.4)×105 |
0.5-1 |
1.5-4 |
50 |
0.5 |
12孔板 |
3.8 |
(2.4-4.8)×105 |
1-2 |
3-8 |
100 |
1 |
6孔板 |
9.5 |
(6-10)×105 |
2-4 |
6-16 |
200 |
2 |
10 cm培养皿 |
55 |
(4-6)×106 |
12-24 |
36-96 |
1000 |
12 |
T75培养瓶 |
75 |
(6-10)×106 |
18-36 |
54-144 |
1000 |
15 |
本产品仅供科研用途,不用于临床诊断!
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